группа компаний "ВИВАРИЙ"

 

Общая анестезия - ингаляционная
• происходит вдыхание испаренного препарата, который в легких всасывается в кровь
• позволяет проводить наркоз любой продолжительности
• требует наличия специального наркозного оборудования
• препарат может содержаться в выдыхаемом воздухе
• лучший метод для продолжительных манипуляций
• для подачи кислорода и газового анестетика требуется наркозный аппарат
• наркозный аппарат состоит из 4 основных элементов:
   - Источник подачи сжатого кислорода
   - Регулятор для подачи газа под постоянным давлением
   - Датчики для измерения потока газа
   - Испаритель, представляющий собой устройство для испарения ингаляционного анестетика и подачи его в систему в определенной концентрации

 

 
Выбор наркозной системы (часть наркозного аппарата) зависит от размера тела животного и типа используемого оборудования. Все наркозно-дыхательные системы должны обеспечивать подачу достаточного количества газообразного анестетика и кислорода для достижения соответствующих параметров вентиляции для животного и удаление отработанных газов, содержащих диоксид углерода. Если отработанные газы не удалять, то они снова попадут в дыхательные пути животного, но в смеси будет содержаться недостаточное количество кислорода для поддержания жизненно важных функций организма.

 

Индукция анестезии у большинства грызунов производиться либо инъекционными анестетиками, либо с помощью камеры. Имеются коммерчески распространяемые анестезиологические камеры для мышей и крыс, а также камеру можно изготовить самостоятельно из стекла или плекигласа. Газовый анестетик подается на дно камеры, а отработанный газ удаляется в верхней ее части. Для быстрой индукции следует быстро наполнить всю камеру анестетиком.

 

                                   Анестезиологические камеры для грызунов

После индукции анестезии животное извлекается из камеры, и на его рот и нос одевается дыхательная маска, представляющая собой открытый дыхательный контур. Выдыхаемые газы проходят мимо краев маски и, пока поддерживается высокий объем подачи кислорода, эти газы попадают в дыхательные пути повторно лишь в незначительном количестве. При чрезмерно низкой скорости потока кислорода животное будет дышать окружающим воздухом, проникающим мимо краев маски, что приведет к разбавлению анестетика и может стать причиной достижения недостаточной глубины наркоза. Основным недостатком применения маски является невозможность проведения искусственной вентиляции легких если у животного остановится дыхание. Для безопасности сотрудников выдыхаемый газ должен фильтроваться и удаляться из операционной.

Масочный наркоз у грызунов (открытый дыхательный контур)
Обычно у грызунов используется модифицированный контур Бэйна, который подсоединяется к маске. В качестве резервуара для смеси газов выступает мешок для возвратного дыхания. Также имеется возможность использования других систем в зависимости от вида животного.

 

Модифицированный контур Бэйна
Также имеется возможность проведения вентиляции у мышей и крыс через эндотрахеальную трубку, хотя для этого требуется большой опыт и наличие дополнительного специального оборудования. Преимущество установки эндотрахеальной трубки заключается в том, что анестетик попадает непосредственно в легкие, поэтому для проведения наркоза требуется меньшая его концентрация; обеспечивается возможность проведения искусственной вентиляции легких животному при остановке дыхания; обеспечивает защита дыхательных путей от попадания жидкости.
 
Краткое описание техники проведения ингаляционной анестезии
 

Индукция:

Индукция анестезии животному производится с помощью внутрибрюшинной инъекции анестетика или с помощью камеры с подачей газового анестетика.

Поддержание анестезии:
После индукции:
• Животное укладывают на теплую поверхность
• На глаза наносится смазка
• На рот и нос накладывается маска
• Начинается подача газового анестетика и кислорода для поддержания анестезии (у грызунов часто используется модифицированный контур Бэйна)
• Чтобы убедиться в достаточной глубине анестезии для проведения процедуры производится проверка рефлексов
• На всем протяжении наркоза осуществляется контроль жизненно важных показателей.
 
Используемые препараты
Наиболее часто в качестве анестетика у крыс и мышей используется изофлюран.

 

 

Преимущества:
• Быстрая индукция и выход из наркоза
• Можно быстро изменить глубину наркоза
• Не оказывает раздражающее действие, невзрывоопасен, неогнеопасен
• Минимальная биотрансформация; почти полное выведение с выдыхаемым воздухом
• Минимальное воздействие на микросомальные ферменты

 

Недостатки:
• Несколько более выраженная депрессия дыхания в сравнении с галотаном, но меньшая депрессия сердечно-сосудистой системы
• Острый запах
• Отсутствие остаточной аналгезии после пробуждения

Стадии наркоза
На различных стадиях наркоза наблюдаются следующие признаки:

Седация	Хвост и голова опущены, двигательная активность замедляется и останавливается, но сохраняется незатрудненное дыхание
Поверхностная анестезия	Отсутствие установочного рефлекса, отмечается заметная реакция на болевые раздражители
Хирургическая стадия	Отсутствует сгибательный рефлекс и реакция на защипывание хвоста, снижение/отсутствие тонуса мышц конечностей, замедленный ровный ритм сердечных сокращений и дыхания
Передозировка	Глубокое нерегулярное дыхание, цианоз (синюшность) подушек стоп, ушей, хвоста, зрачки не реагируют на свет, замедленное нерегулярное биение сердца

Даже в случае проведения инъекционной анестезии желательно обеспечить подачу кислорода животному для поддержания работы дыхательной системы во время наркоза.

Наркоз – это неестественное состояние, т.е. животное не просто спит, и каждый должен это понимать. Степень сопутствующего риска зависит от состояния здоровья животного, опыта хирурга/анестезиолога и имеющегося оснащения.
 
МОНИТОРИНГ

• Следует проводить мониторинг состояния животного для оценки достаточного уровня обезболивания и развития бессознательного состояния для проведения процедуры – достаточна ли глубина наркоза?
• Так как анестетики часто оказывают отрицательное воздействие на сердечно-сосудистую, дыхательную систему и систему терморегуляции, то для своевременного выявления возможных проблем и их устранения необходимо проводить контроль жизненно важных показателей – имеются ли нежелательные явления, обусловленные применением анестетика

Важно попытаться поддерживать частоту сердечных сокращений, частоту дыхания и температуру тела во время наркоза в пределах нормальных физиологических значений.

 

Параметры, используемые для мониторинга глубины наркоза у грызунов

• Глубина и частота дыхания
   - Следите за расширением грудной клетки
   - Следите за выделениями на задней стенке глотки (появление булькающего звука) – для очистки дыхательных путей может понадобиться отсосать выделения или вытереть их тампоном

• Частота сердечных сокращений
   - Оценить сердцебиение можно, аккуратно пальпируя боковые стенки грудной клетки
   - Подсчитать частоту сердечных сокращений будет невозможно, можно оценить скорость и ритм
   - Для контроля частоты сердечных сокращений можно использовать фонендоскоп, ЭКГ, допплерометрию или пульсоксиметр (если имеются)

• Цвет слизистых оболочек
   - Десна должны быть розовыми; синюшность (цианоз) указывают на развитие гипоксии (очень низкий уровень кислорода)
   - Очень удобным показателем для оценки артериального давления является время наполнения капилляров. Анализ производится путем нажатия на десны до белизны с последующим контролем скорости, с которой кровь наполняет ткань. В норме это происходит менее, чем на 2 секунды.

• Температура тела
   - Анестезия снижает терморегуляторные способности организма
   - Тело грызунов остывает очень быстро из-за малой массы
   - Наиболее частой причиной смерти грызунов во время анестезии является гипотермия
   - Животные с низкой температурой тела дольше пробуждаются от наркоза
   - Для поддержания нормальной температуры тела необходима температурная поддержка
   - К возможным способам относятся;

        o Одеяло с циркулирующей теплой водой – наиболее безопасный метод, позволяющий избежать ожогов
        o Коврик с электрообогревом – обеспечьте достаточную изоляцию, подложив сложенную в несколько раз простыню между животным и ковриком во избежание случайных ожогов
        o Неплотно обмотать животное воздушно-пузырьковой пленкой
        o Нагревательная лампа – не помещайте ее слишком близко во избежание развития ожогов и обязательно удостоверьтесь, что определенная часть клетки защищена от нагревания, чтобы имелось более прохладное место, куда можно поместить животное для профилактики гипертермии
        o Поместить прокладку между животным и рабочей поверхностью (газета, бумажное или матерчатое полотенце, шерстяную ткань)
        o Бутылка с горячей водой или аналогичные предметы (убедитесь, что вода не очень горячая, чтобы не вызвать ожог!!!)

   - Определить температуру у грызунов затруднительно; у крыс можно использовать маленькие ректальные термометры; у мышей - гладкие ректальные зонды, импланты 

• Рефлексы – используются для оценки степени угнетения функций центральной нервной системы
   - Подошвенный рефлекс (сгибание пальцев)

        o Оценивается путем выпрямления конечности и защипывания перепонки между пальцами (но не самих пальцев)
        o Если конечность двигается, сокращаются мышцы или животное пищит, значит наркоз недостаточно глубокий
        o Отсутствие реакции указывает на развитие глубокой анестезии
        o Наилучшим образом подходит для оценки при проведении анестезии барбитуратами; эффективность снижается при ингаляционной анестезии (рефлекс исчезает на более поверхностных фазах наркоза)

   - Прищипывание хвоста: используется у маленьких грызунов, если лапа слишком маленькая для оценки подошвенного рефлекса
   - Надбровный рефлекс (мигательный рефлекс):

        o Проверяется аккуратным уколом кожи в области медиального угла глаза или проведением пальца по ресницам
        o Если животное моргает или у него двигаются веки, значит уровень анестезии недостаточный
        o Данный рефлекс исчезает при легкой или средней глубине наркоза
        o Данный рефлекс нельзя использовать для оценки глубины анестезии при проведении наркоза кетамином, так как он угнетает мигательный рефлекс у животных до достижения хирургической стадии наркоза.

   - Анальный рефлекс
        o Сокращение анального сфинктера при внезапном касании
        o Исчезает при средней и глубокой анестезии

• Другое
   - Слезотечение (выработка слезной жидкости)

        o Слезотечение снижается на более глубоких стадиях наркоза, что
        o Приводит к сухости роговицы и может стать причиной кератита или изъязвлений
        o **в конъюнктивальный мешок следует заложить офтальмологическую мазь для
        o Профилактики сухости глаз и повреждения роговицы**

   - Релаксация мышц

        o Происходит на фоне применения большинства анестетиков, за исключением кетамина, который вызывает ригидность
        o Для контроля глубины анестезии можно оценивать тонус жевательных мышц – они должны быть расслаблены
        o На хирургической стадии наркоза, проводимого галотаном и изофлюраном

Имеется широкий выбор инструментов для контроля жизненно важных показателей животных во время наркоза, например, аппараты для измерения артериального давления, аппараты ЭКГ, пульсоксиметры, допплерометры и т.д

 

• Период пробуждения включает время от завершения процедуры, проведенной под наркозом, до:
   - Восстановления сознания
   - Восстановления способности самостоятельно сохранять стабильное положение тела
   - Отключения устройств для контроля жизненных показателей
   - Восстановления нормальных физиологических функций (питье, мочеиспускание, еда, дефекация)

• Период пробуждения может длиться несколько минут или более 24 часов, в зависимости от продолжительности анестезии и характера вмешательства
• В посленаркозном периоде следует проводить непрерывный мониторинг состояния животного
• Если животное неполностью пробудилось к концу рабочего дня следует организовать проведение регулярных осмотров квалифицированными сотрудниками в вечернее и ночное время. Следует планировать проведение хирургических вмешательств в утреннее время, чтобы обеспечить достаточный период для проведения послеоперационного наблюдения за состоянием животных
• Каждое животное следует содержать в отдельных клетках до пробуждения
• Ни в коем случае неполностью пробудившееся животное нельзя возвращать в клетку с другими животными, так как у них не исключается каннибализм
• Животное следует уложить в физиологическое положение для обеспечения свободного дыхания
• Грызунов нельзя укладывать непосредственно на подстилку из мелких частиц, так как они могут закупорить ноздри; следует использовать теплую впитывающую бумажную или тканевую подстилку
• Также при укладывании грызунов следует следить, чтобы нос не утыкался в стенку клетки
• В периоде пробуждения следует продолжать согревание животного; животные просыпаются быстрее, если температура тела поддерживается в нормальном диапазоне
• Согревание в послеоперационном/посленаркозном периоде следует продолжать до полного исчезновения последствий применения анестетика. Этот период может длиться несколько часов после восстановления установочного рефлекса

 

• Операция может привести к чрезмерной потере жидкости
• После пробуждения животное может некоторое время не пить
• Из-за малого размера тела грызуны подвержены развитию обезвоживания в посленаркозном периоде
• Для восполнения потерь необходимо обеспечить поступление жидкости, подогретой до температуры тела
• Потребность в жидкости во время операции составляет около 10 мл/кг/ч
• Жидкость можно вводить подкожно или внутрибрюшинно во время анестезии; если животное в сознании, жидкость можно давать перорально
• Контроль массы тела животного до и после операции позволяет примерно оценить объем потерь жидкости

 

• В течение нескольких дней после операции следует проводить тщательный контроль за состоянием животного
• Очень полезными объективными показателями являются масса тела и температура тела
• Для оценки эффективности восстановления после операции и необходимости дальнейшего назначения анальгетиков можно использовать другие показатели, например, поведение животного (горбится, забивается в угол), депрессия, отказ от еды или питья, вылизывание места операции и т.д.
• Для улучшения выздоровления животному может потребоваться проведение инфузионной терапии и назначение дополнительного питания
• Анальгетики в раннем послеоперационном периоде следует применять в рекомендованных дозах и с рекомендованной частотой
• Необходимо тщательно контролировать изменение физиологических процессов и/или поведения животного, что может указывать на наличие болевых ощущений

 

Клинические признаки болевых ощущений у грызунов

Признак	Пример
Снижение активности	Грязный вид из-за недостаточного ухода за шерстью; передвижение с неохотой; хромота; нахождение в углу клетки в стороне от остальных животных
Изменение поведения	Более или менее смирное или агрессивное
Беспокойство	Трясет или царапает определенную область тела; гиперактивность, бег по кругу, подергивания кожи
Ухудшение аппетита	Снижение приема пищи и/или воды
Изменение осанки	Горбится (боль в животе); стоит с разведенными передними лапами (боль в груди)
Членовредительство	Чрезмерное вылизывание или жевание конечностей
Нарушение дефекации или мочеиспускания	Запор; уплотнение стула; учащение или урежение мочеиспускания; недержание мочи
Внешний вид	Взъерошенная шерсть; помутнение глаз

 

ХОРОШИЙ УХОД ИМЕЕТ ВАЖНОЕ ЗНАЧЕНИЕ ДЛЯ ОБЕСПЕЧЕНИЯ ХОРОШЕЙ ВЫЖИВАЕМОСТИ В ПОСЛЕОПЕРАЦИОННОМ ПЕРИОДЕ!!!